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將動(dòng)物組織或細(xì)胞分散成單個(gè)細(xì)胞，在模擬機(jī)體內(nèi)的生長(zhǎng)環(huán)境條件下，使其在體外環(huán)境繼續(xù)生長(zhǎng)增殖的過(guò)程，稱為細(xì)胞培養(yǎng)。體外培養(yǎng)可分為原代培養(yǎng)（亦稱初代培養(yǎng)）和傳代培養(yǎng)（亦稱繼代培養(yǎng)）。原代培養(yǎng)是指將機(jī)體取出的組織或細(xì)胞進(jìn)行初次培養(yǎng)的過(guò)程。初次培養(yǎng)的細(xì)胞大約增殖10代左右，這樣的細(xì)胞稱為原代細(xì)胞。從原代培養(yǎng)的細(xì)胞繼續(xù)轉(zhuǎn)接培養(yǎng)稱為傳代培養(yǎng)。在體外環(huán)境條件下持續(xù)傳代培養(yǎng)的細(xì)胞稱為傳代細(xì)胞。

（一）體外培養(yǎng)的細(xì)胞根據(jù)其生長(zhǎng)方式

1．貼壁型依賴性細(xì)胞

生長(zhǎng)時(shí)需要附著于某些帶適量正電荷的固體或半固體表面，大多數(shù)動(dòng)物細(xì)胞體外培養(yǎng)時(shí)，均以此種方式生長(zhǎng)。非淋巴組織的細(xì)胞、多種異倍體細(xì)胞也屬此種類型。

2．非貼壁依賴性細(xì)貼胞

此類細(xì)胞體外生長(zhǎng)不必貼壁，可在培養(yǎng)基中懸浮生長(zhǎng)，血液、淋巴組織細(xì)胞、腫瘤細(xì)胞、雜交瘤細(xì)胞、轉(zhuǎn)化細(xì)胞系等都屬此類細(xì)胞。原則上各種動(dòng)物組織都可以進(jìn)行體外培養(yǎng)。而實(shí)際上幼體組織比老齡組織更容易培養(yǎng)，尤其是胚胎組織。分化程度低的比分化程度高的容易培養(yǎng)；腫瘤組織比正常組織容易培養(yǎng)。任何動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)均須從從原代培養(yǎng)開始。

2.培養(yǎng)方法

（1）取材

首先要對(duì)所取動(dòng)物組織的各種情況做詳細(xì)記錄。從動(dòng)物體內(nèi)取材必須嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作。所用器皿事前經(jīng)嚴(yán)格的消毒滅菌。采用各種適宜的方法處死動(dòng)物，取出組織放入小燒杯中，用尖嘴眼科剪刀將組織塊剪碎成1mm3大小，用吸管吸取Hanks液沖下剪刀上的碎塊，補(bǔ)加3～5mL Hanks液，用吸管輕輕吹打，低速離心，棄去上清液，留下組織塊。也可用兩手術(shù)刀片將組織塊切碎，這樣對(duì)細(xì)胞損傷較小，但操作時(shí)間長(zhǎng)，容易污染。對(duì)某些軟組織如腫瘤、胚胎、腦等可將碎組織塊放入注射器玻璃管中擠壓分離。也可用1mm、10μm、20μm三種規(guī)格的不銹鋼或尼龍網(wǎng)篩擠壓分離，但對(duì)較硬的組織和纖維組織效果不好。

（2）分離

組織消化法是用生物化學(xué)的方法將剪碎的組織塊分散成細(xì)胞團(tuán)或單細(xì)胞。常用的消化液有：胰蛋白酶適用于細(xì)胞間質(zhì)較少的軟組織，如胚胎、羊膜、上皮、肝、腎以及傳代細(xì)胞等。

操作方法：

1）將剪碎的組織塊放入有玻璃珠的三角燒瓶種，加入30～50倍體積的0.25％胰蛋白酶；

2）37℃水浴內(nèi)消化30～60 min，每5～10 min搖動(dòng)一次，根據(jù)效果可中間更換消化液，靜止10 min，吸去2/3清液。補(bǔ)加新鮮胰蛋白酶；

3）Hanks液漂洗兩次，每次2～3 min；

4）800r/min離心5 min，棄上清液，加入營(yíng)養(yǎng)液，如有大塊，可用紗網(wǎng)過(guò)濾。如消化傳代細(xì)胞，可與EDTA混用。

膠原酶——這種用細(xì)菌提取的酶對(duì)膠原和細(xì)胞間質(zhì)有較強(qiáng)的消化作用。使用于消化纖維組織、上皮組織、癌組織等。此酶步受Ca2+、Mg2+的螯和作用，可用BBS和含血清培養(yǎng)基配制成濃度為200u/ml或0.1～0.3 mg/ml的溶液。其作用溫和，無(wú)須機(jī)械震蕩。

5）培養(yǎng)瓶中放入1～5 mm3大小的碎組織塊，加5 ml 2000u/mL的膠原酶溶液，使終濃度為200u/ml，pH6.5；

6）36℃水浴24～48 h，視情況可適當(dāng)延長(zhǎng)，無(wú)需震蕩，期間可更換酶液一次；

7）見(jiàn)組織塊已變軟，分散于瓶低，輕微震蕩即散成細(xì)胞團(tuán)或單細(xì)胞，小心倒出培養(yǎng)液，瓶低可能附著一些巨噬細(xì)胞，借此可將其分開，單獨(dú)培養(yǎng)或棄之不用；

8）800r/min離心5 min，棄上清液，重懸于BBS液中，在重復(fù)離心一次；

9）加入培養(yǎng)液制成細(xì)胞懸液用于接種。

其他的酶如鏈酶蛋白酶、粘蛋白酶、蝸牛酶等也可用于培養(yǎng)細(xì)胞的消化。需根據(jù)酶的作用特點(diǎn)及組織成分的不同適當(dāng)選用。EDTA最適用于消化傳代細(xì)胞，常與胰蛋白酶配合用，方法如前所述。

10）細(xì)胞計(jì)數(shù)

細(xì)胞懸液制成后，需要計(jì)數(shù)懸浮液中細(xì)胞的濃度，通常以“細(xì)胞個(gè)數(shù)/ml”表示。在培養(yǎng)貼壁細(xì)胞或懸浮細(xì)胞時(shí)也需要檢查培養(yǎng)液中的細(xì)胞濃度，檢查方法如下：

在干凈的離心管中加入9滴細(xì)胞懸液，在加入0.4%臺(tái)盼藍(lán)（錐蟲藍(lán)）1滴，混勻后靜置2～3 min；將計(jì)數(shù)板平放在顯微鏡臺(tái)上，在蓋片邊緣加入1～2滴染色的細(xì)胞懸液，使之完全充滿計(jì)數(shù)板與蓋玻片間的空間，勿留氣泡，勿使蓋片漂浮。

A. 在顯微鏡下記錄計(jì)數(shù)板四角四個(gè)大格中的細(xì)胞總數(shù)，原則是染藍(lán)的細(xì)胞不數(shù)（死細(xì)胞），無(wú)色的細(xì)胞計(jì)數(shù)（活細(xì)胞，壓線的細(xì)胞，數(shù)上不數(shù)下，數(shù)左不數(shù)右，一團(tuán)細(xì)胞按一個(gè)細(xì)胞計(jì)數(shù)；

B. 按下列公式計(jì)算細(xì)胞懸浮濃度：

細(xì)胞懸液濃度（細(xì)胞個(gè)數(shù)/ml）=（4大格細(xì)胞總數(shù)/4）×104×稀釋倍數(shù)計(jì)數(shù)時(shí)要注意：如果細(xì)胞團(tuán)數(shù)超過(guò)10%，說(shuō)明消化過(guò)程進(jìn)行得不充分；如果細(xì)胞數(shù)少于20個(gè)/mm3或多于50個(gè)/mm3說(shuō)明稀釋不當(dāng)，需重新操作。

（3）常用培養(yǎng)法

1）組織塊培養(yǎng)法

將組織塊剪切成小塊，直接放入培養(yǎng)瓶（皿）中，貼附一段時(shí)間后，細(xì)胞從組織塊長(zhǎng)出，最終形成單層細(xì)胞。該法簡(jiǎn)便，適合上皮細(xì)胞、骨骼肌細(xì)胞的原代培養(yǎng)，更適合組織量少的牙髓細(xì)胞原代培養(yǎng)（用蓋玻片條培養(yǎng)法）。

2）懸滴培養(yǎng)法

組織培養(yǎng)是Harrison（1907年）和Carrel（1912年）等首先發(fā)展建立的體外組織培養(yǎng)方法。他們?cè)谳d玻片或蓋玻片上滴上血漿或淋巴液，將一小片組織埋于血漿或淋巴液中，加胚胎浸出液和血清，混合，血漿凝固固定組織塊，胚胎浸出液和血清提供營(yíng)養(yǎng)，細(xì)胞從外植塊向四周遷移生長(zhǎng)。懸滴培養(yǎng)法是最簡(jiǎn)單和最原始的培養(yǎng)法。

將培養(yǎng)的組織剪成1 mm3的小塊為宜。圖中使用一片較大的方蓋片和一片小蓋片粘附在一起，是為了換液和傳代方便。加血漿，接種組織，再加胎汁使之與血漿充分混合。稍置片刻待血漿凝固，則組織小塊被凝固于血漿胎汁混合物中。然后取一凹玻片，四角涂凡士林少許，把蓋片反轉(zhuǎn)粘附在凹玻片上。隨后沿方蓋片四周涂融蠟封閉，勿使其漏氣，置于37℃溫箱培養(yǎng)。

此法細(xì)胞生長(zhǎng)空間狹小、氣體不足，細(xì)胞不能持續(xù)長(zhǎng)時(shí)間生長(zhǎng)，培養(yǎng)基易液化，需要常更新培養(yǎng)基。其次是凹玻片折光，不便于直接觀察活細(xì)胞和攝影。

3）卡氏瓶培養(yǎng)法

為了擴(kuò)大細(xì)胞生長(zhǎng)面積和空間，Carrel設(shè)計(jì)了卡氏瓶培養(yǎng)，此法與雙蓋玻片法原理相似，不同的是組織塊被植入到特別的卡氏瓶中培養(yǎng)。細(xì)胞在卡氏瓶中，氣體充足，附著面寬闊，營(yíng)養(yǎng)豐富，細(xì)胞能較好地生長(zhǎng)，而且卡氏瓶適合觀察。操作方法是：

A．將組織剪切成細(xì)小碎塊后，用平衡鹽溶液漂洗。

B．組織碎塊轉(zhuǎn)移到第二只培養(yǎng)皿中，在解剖顯微鏡下，將不需要的組織諸如脂肪或壞死的材料，用外科手術(shù)刀交叉解剖掉，將組織塊切成約1mm3小塊。

C．用滴管將組織小塊移到消毒離心管或普通容器內(nèi)（注意吸管在吸組織小塊前，先用平衡鹽溶液弄濕內(nèi)表面，否則易粘著組織小塊）。靜置使組織小塊下沉。吸去上清液，換入新鮮平衡鹽溶液漂洗組織小塊，如此重復(fù)兩到三次。

D．將組織小塊轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)，每只體積為25 ml的培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)可放置20～30塊組織小塊，吸去液體。在每只25 ml培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加入1ml生長(zhǎng)培養(yǎng)液，輕輕地傾斜擺動(dòng)培養(yǎng)瓶。使組織小塊均勻地分布于生長(zhǎng)瓶?jī)?nèi)壁表面上。把瓶蓋蓋上，放入恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)或放入36.5℃暖房?jī)?nèi)，靜置18～24 h。

E．待組織塊均已沾附玻壁上后，經(jīng)過(guò)3 ~5 d，在每只25 ml的培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加5 ml培養(yǎng)液，然后每周更新培養(yǎng)液一次。培養(yǎng)3～5周，組織塊周圍的生長(zhǎng)暈不斷地增長(zhǎng)，當(dāng)細(xì)胞從組織向四周伸展，細(xì)胞生長(zhǎng)較多時(shí)用肉眼或低倍鏡下觀察猶如日暈，稱“生長(zhǎng)暈”。

F．將生長(zhǎng)暈中央的組織塊用外科小刀取出，用預(yù)先濕潤(rùn)的滴管移到另一新的培養(yǎng)瓶中，從步驟④起重復(fù)操作。

G．在吸去組織塊的生長(zhǎng)暈培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)，換入新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。待生長(zhǎng)暈細(xì)胞擴(kuò)展到蓋住培養(yǎng)瓶底約50%表面時(shí)，用來(lái)進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。

4）單層細(xì)胞培養(yǎng)法

自20世紀(jì)50年代，細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)有兩個(gè)大的改進(jìn)：一是在研究細(xì)胞代謝的基礎(chǔ)上開始應(yīng)用合成培養(yǎng)基，二是采用了胰酶消化分散細(xì)胞的技術(shù)，把組織團(tuán)塊分散成較小的細(xì)胞團(tuán)或單個(gè)細(xì)胞。采用這些措施的結(jié)果，細(xì)胞不僅在培養(yǎng)環(huán)境中長(zhǎng)得更好，而且由于細(xì)胞生存在液體培養(yǎng)基中，無(wú)血漿支架，只能附在瓶壁上長(zhǎng)成單層，形成所謂單層細(xì)胞培養(yǎng)。

單層細(xì)胞培養(yǎng)更進(jìn)一步促進(jìn)了組織培養(yǎng)法的發(fā)展。由于單層細(xì)胞便于傳代和觀察，從而演變出了建立長(zhǎng)期傳代的細(xì)胞系和單細(xì)胞分離培養(yǎng)純細(xì)胞株的技術(shù)，使組織培養(yǎng)技術(shù)更趨完善。

單層細(xì)胞培養(yǎng)有下列幾點(diǎn)好處：
①更換新鮮培養(yǎng)液比較容易，可先用血清培養(yǎng)液培養(yǎng)，然后可方便地?fù)Q為無(wú)血清培養(yǎng)液培養(yǎng)，用于觀察某些因子加到培養(yǎng)液后的作用，以及從培養(yǎng)液中減去某些因子后對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響；
②如實(shí)驗(yàn)要求細(xì)胞密度較高時(shí)，較容易采用灌注技術(shù)提供高密度細(xì)胞所需要的營(yíng)養(yǎng)成分；
③當(dāng)細(xì)胞粘附在基底質(zhì)上后，更容易表達(dá)某些產(chǎn)物；
④單層細(xì)胞培養(yǎng)更適用許多細(xì)胞系。

單層細(xì)胞培養(yǎng)法：取材后剪成1～3 mm3的小塊，經(jīng)過(guò)消化分離，細(xì)胞計(jì)數(shù)，分裝入培養(yǎng)瓶中保溫培養(yǎng)。

培養(yǎng)過(guò)程中隨著細(xì)胞的增長(zhǎng)，尤其在細(xì)胞生長(zhǎng)十分旺盛時(shí)，代謝產(chǎn)物堆積，CO2增多，營(yíng)養(yǎng)液氫離子濃度升高，酚紅指示劑顏色變黃。如估計(jì)營(yíng)養(yǎng)成分未耗盡，此時(shí)只需加入少許NaHCO3調(diào)節(jié)即可；如營(yíng)養(yǎng)成分已枯竭，則需重新更換營(yíng)養(yǎng)液。在使用自控CO2溫箱時(shí)培養(yǎng)瓶塞用無(wú)菌紗布棉塞，箱內(nèi)穩(wěn)定提供5% CO2，能保持培養(yǎng)液恒定pH值。

傳代培養(yǎng)：當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)鋪滿瓶底，需進(jìn)行傳代培養(yǎng)。細(xì)胞分裂增殖擴(kuò)展連片，占滿器皿表面，這時(shí)需要對(duì)其分離，并重新培養(yǎng)，這一操作過(guò)程稱之為傳代。有80%～90%或剛剛?cè)繀R合的細(xì)胞，是傳代的理想時(shí)期。過(guò)早，細(xì)胞產(chǎn)量不足；過(guò)晚，致使細(xì)胞健康狀態(tài)不佳。因此，把握好時(shí)機(jī)很重要。另外，細(xì)胞對(duì)酶的消化作用反應(yīng)不一，有的敏感，有的遲鈍。根據(jù)細(xì)胞特點(diǎn)，適度掌握細(xì)胞消化時(shí)間和選擇適宜的方法很關(guān)鍵。處理得好，細(xì)胞損失少，細(xì)胞濃度均勻，細(xì)胞生長(zhǎng)速度一致。

① 吸出培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)舊培養(yǎng)液；

② 加入胰蛋白酶和EDTA混合液蓋滿瓶底；

③ 作用2～5 min，檢查，如有細(xì)胞間隙變大，細(xì)胞質(zhì)回縮現(xiàn)象，終止消化；

④ 吸出消化液，加入Hanks液，輕輕轉(zhuǎn)動(dòng)以免細(xì)胞流失，洗去殘留的消化液，如果單用胰蛋白酶，可直接加入培養(yǎng)液，免洗；

⑤ 用吸管輕輕吹打瓶壁，使細(xì)胞脫落制成懸液，記數(shù)后記錄其濃度；

⑥ 重新接種培養(yǎng)。

此法可大量培養(yǎng)細(xì)胞組織，特別適用于生物制品生產(chǎn)，但用于經(jīng)常性細(xì)胞培養(yǎng)研究則太繁瑣，易染菌。

5）組織塊單層細(xì)胞培養(yǎng)法

此法的特點(diǎn)在于把組織剪成更小的小塊（0.5～1 mm3大?。?，在不加任何粘著劑的情況下，由于組織體積很小，能直接附于瓶壁上，細(xì)胞自組織塊邊緣向外長(zhǎng)出，最后連接成片形成單層細(xì)胞，從而簡(jiǎn)化了原代單層細(xì)胞的培養(yǎng)過(guò)程。組織塊單層細(xì)胞培養(yǎng)法，是當(dāng)前各培養(yǎng)室常用的初代培養(yǎng)法。